Wirusobójcze działanie ekstraktów <i>Crithmum maritimum </i>L. na wirusa ECHO 9

Abstrakt

Ocenę aktywności cytotoksycznej ekstraktów przeprowadzono wobec komórek linii GMK. Badane substancje rozcieńczano w płynie hodowlanym z dodatkiem 2% surowicy cielęcej do końcowego stężenia 0,025; 0,05; 0,1; 0,25; 0,5; 1; 2; 5 mg/ml. Komórki poddane działaniu ekstraktów inkubowano w 37ºC w obecności 5% CO2 przez 24-72 h. Cytotoksyczność substancji oceniano przy użyciu testu formazanowego MTT. Po określeniu najwyższego nietoksycznego stężenia substancji oceniano ich aktywność wirusobójczą wobec wirusa ECHO 9. Ustalono następujące nietoksyczne dawki: metanolowego ekstraktu (100%) 2 mg/ml i metanolowo-wodnego ekstraktu (50% metanol) 5 mg/ml. Niewielkie wirusobójcze działanie wykazały obydwa ekstrakty. Ekstrakt metanolowy spowodował obniżenie poziomu replikacji wirusa o 1,37 log w stosunku do kontroli, natomiast ekstrakt metanolowo-wodny (2 mg/ml i 5 mg/ml) o 1,14 log.

PDF (Angielski)

Bibliografia

1. Abad M. J. et al.: Search for antiviral activity in higher plant extracts. Phytother. Res., 14, 604, 2000.

2. Apers S. et al.: Antiviral, haemolytic and molluscicidal activities of Triterpenoid saponins from Maesa lanceolata: establishment of structure-activity relationships. Planta Med., 67, 528, 2001.

3. Bermejo P. et al.: Antiviral activity of seven iridoids, three saikosaponins and one phenylpropanoid glycoside extracted from Bupleurum rigidum and Scrophularia scorodonia. Planta Med., 68, 106, 2002.

4. Cella M. et al.: Virucidal activity presence in Trichilia glabra leaves. Rev Argent Microbiol., 36, 136, 2004.

5. Cheng P. W. et al.: Bupleurum kaoi inhibits Coxsackie B virus type 1 infection of CCFS-1 cells by induction of type I interferons expression. Food Chem. Toxicol., 45, 24, 2007.

6. Chiang L. C. et al.: Cytotoxicity and anti-hepatitis B virus activities of saikosaponins from Bupleurum species. Planta Med., 69, 705, 2003.

7. Christensen L. P., Brandt K.: Bioactive polyacetylenes in food plants of the Apiaceae family: occurrence, bioactivity and analysis. J. Pharm. Biomed. Anal., 41, 683, 2006.

8. Gebre-Mariam T. et al.: Antiviral activities of some Ethiopian medicinal plants used for the treatment of dermatological disorders. J. Ethnopharmacol., 104, 182, 2006.

9. Głowniak P. et al.: Activity of Crithmum maritimum L. (Apiaceae) against Gram-positive bacteria. Ann. UMCS Sect. DDD, 19, 123, 2006.

10. Han Y. Q. et al.: In vivo and in vitro anti-hepatitis B virus activity of total phenolics from Oenanthe javanica. J. Ethnopharmacol., 118, 148, 2008.

11. Jassim S. A. A., Naji M. A.: Novel antiviral agents: a medicinal plant perspective. J. Appl. Microbiol., 95, 412, 2003.

12. Karagöz A. et al.: Antiviral activity of Sanicula europaea L. extracts on multiplication of human parainfluenza virus type 2. Phytother Res., 13, 436, 1999.

13. Khan M. T. et al.: Extracts and molecules from medicinal plants against herpes simplex viruses. Antiviral Res., 67, 107, 2005.

14. Kumarasamy Y. et al.: Screening seeds of Scottish plants for antibacterial activity. J. Ethnopharmacol., 83, 73, 2002.

15. Marongiu B. et al.: Isolation of Crithmum maritimum L. volatile oil by supercritical carbon dioxide extraction and biological assays. Nat. Prod. Res., 21, 1145, 2007.

16. Meot-Duros L., Magne Ch.: Antioxidant activity and phenol content of Crithmum maritimum L. leaves. Plant Physiol. Bioch., 47, 37, 2009.

17. Mukhtar M. et al.: Antiviral potentials of medicinal plants. Virus Research, 131, 111, 2008.

18. Müller V. et al.: Evaluation of Antiviral Activity of South American Plant Extracts Against Herpes Simplex Virus Type 1 and Rabies Virus. Phytother. Res., 21, 970, 2007.

19. Pillay D., Zambon M.: Antiviral drug resistance. BMJ, 317, 660, 1998.

20. Pillay D.: The priorities for antiviral drug resistance surveillance and research. J. Antimicrob. Chemother., 60, 57, 2007.

21. Reed L. J., Muench M. A.: A simple method of estimating fifty percent end points. Am. J. Hyg., 27, 493, 1938.

22. Ruber to G. et al.: Antioxidant and antimicrobial activity of Foeniculum vulgare and Crithmum maritimum essential oils. Planta Med., 66, 687, 2000.

23. Saxena S. K. et al.: Advances in antiviral drug discovery and development: Part I: Advancements in antiviral drug discovery. Future Virol., 60, 57, 2009.

24. Takenouchi T., Munekata E.: Amyloid beta-peptide-induced inhibition of MTT reduction in PC12h and C1300 neuroblastoma cells: effect of nitroprusside. Peptides, 19, 365, 1998.

25. Senatore F. et al.: Composition and antibacterial activity of the essential oil from Crithmum maritimum L. (Apiaceae) growing wild in Turkey. Flavour Fragr. J., 15, 186, 2000.

26. Uozaki M. et al.: Antiviral effect of octyl gallate against DNA and RNA viruses. Antiviral Res., 73, 85, 2007.

27. Wang W. N. et al.: Effect of Oenanthe javanica flavone on human and duck hepatitis B virus infection. Acta Pharmacol. Sin., 26, 587, 2005.

Creative Commons License

Praca jest udostępniana na licencji Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 3.0 Unported License.

Prawa autorskie (c) 2009 Autorzy

Downloads

Download data is not yet available.