Wpływ subinhibicyjnych stężeń chinupristyny/dalfopristyny, linezolidu i wankomycyny na produkcję śluzu u Staphylococcus epidermidis
Słowa kluczowe:
Staphylococcus epidermidis, produkcja śluzu, chinupristyna/dalfopristyna, linezolid, wankomycyna, stężenia subinhibicyjneAbstrakt
Jednym z głównych czynników odpowiedzialnych za zdolność do produkcji biofilmu szczepów Staphylococcus epidermidis jest wytwarzanie zewnątrzkomórkowego śluzu. Stanowi on swoistą barierę ochronną przed aktywnością antybiotyków oraz układu immunologicznego gospodarza, ale również jest źródłem składników odżywczych dla komórek tworzących tę strukturę. Celem pracy była ocena wpływu wybranych antybiotyków na zdolność do produkcji śluzu u S. epidermidis. Stwierdzono, że najsilniej wankomycyna, a w następnej kolejności linezolid i chinupristyna/dalfopristyna hamowały produkcję śluzu w stężeniach subinhibicyjnych. Uzyskane dane sugerują, że te antybiotyki, szczególnie wankomycyna, mogą hamować produkcję biofilmu, prawdopodobnie bezpośrednio poprzez inhibicję wytwarzania zewnątrzkomórkowego śluzu.
Bibliografia
1. Casey A.L. Lambert P.A., Elliott T.S.: Staphylococci. Int. J. Antimicrob. Agents. 29, Suppl. 3, S23, 2007.
2. Cerca N., Martins S., Sillankorva S. et al.: Effects of growth in the presence of subinhibitory concentrations of dicloxacillin on Staphylococcus epidermidis and Staphylococcus haemolyticus biofilms. Appl. Environ. Microbiol., 71, 8677, 2005.
3. Chisari G., Accossano S., Reibaldi M.: Effect of aminoglycosides (sub-MIC) on adherence of coagulase-negative staphylococci to intraocular lens surface. J. Chemother., 14, 574, 2002.
4. Donlan R.M., Costerton W.: Biofilms: survival mechanisms of clinically relevant microorganisms. Clin. Microbiol. Rev., 15, 167, 2002.
5. Drago L., De Vecchi E., Valli M. et al.: Effect of linezolid in comparison with that of vancomycin on glycocalix production: in vitro study. Antimicrob. Agents Chemother., 46, 598, 2002.
6. Dunne M.W. Jr.: Bacterial adhesion: seen any good biofilms lately. Clin. Microbiol. Rev., 15, 155, 2002.
7. Freeman D.J., Falkiner F.R., Keane C.T.: New methods for detecting slime production by coagulase negative staphylococci. J. Clin. Pathol., 42, 872, 1989.
8. Götz F.: Staphylococcus and biofilms. Mol. Microbiol., 43, 1367, 2002.
9. Lindsay D., von Holy A.: Bacterial biofilms within the clinical settings: what healthcare professionals should know. J. Hosp. Infect., 64, 313, 2006.
10. Růžička F., Hola V., Votava M. et al.: Biofilm detection and the clinical significance of Staphylococcus epidermidis isolates. Folia Microbiol., 49, 596, 2004.
11. Vidya K.C., Mallya P.S., Rao P.S.: Inhibition of bacterial adhesion by subinhibitory concentrations of antibiotics. Indian J. Med. Microbiol., 23, 102, 2005.
12. Watnick P., Kolter R.: Biofilm, city of microbes. J. Bacteriol., 182, 2675, 2000.
13. Yassien M., Khardori N.: Interaction between biofilms formed by Staphylococcus epidermidis and quinolones. Diagn. Microbiol. Infect. Dis., 40, 79, 2001.
14. Yasuda H., Ajiki Y., Koga T. et al.: Interaction between clarithromycin and biofilms formed by Staphylococcus epidermidis. Antimicrob. Agents Chemother., 38, 138, 1994.
Pobrania
Opublikowane
Numer
Dział
Licencja
Prawa autorskie (c) 2010 Autorzy
Praca jest udostępniana na licencji Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 3.0 Unported License.
