Wpływ jonów manganu, kadmu, ołowiu i rtęci na ekspresję kinazy białkowej aktywowanej SNF1/AMP w wątrobie, płucach, nerce i sercu szczurów
Słowa kluczowe:
kinaza białkowa aktywowana SNF1/AMP (SNARK), mangan, kadm, ołów, rtęć, szczuryAbstrakt
Ekspresja mRNA kinazy białkowej aktywowanej SNF1/AMP była istotnie obniżona w płucach, sercu i nerce szczurów otrzymujących mangan. Obserwowano znaczną indukcję ekspresji mRNA kinazy białkowej SNARK w wątrobie i płucach szczurów otrzymujących ołów i rtęć, ale kadm zwiększał ekspresję tego mRNA jedynie w wątrobie. W tym samym czasie ekspresja mRNA kinazy SNARK w sercu była zmniejszona u zwierząt otrzymujących sole manganu, ołowiu i rtęci. Wyniki tego badania wskazują zatem, że kadm, mangan, ołów i rtęć mogą wpływać na niektóre ważne mechanizmy regulacyjne, które kontrolują metabolizm komórkowy na poziomie kinazy białkowej SNARK.
Bibliografia
1. Aragón T. et al.: Messenger RNA targeting to endoplasmic reticulum stress signalling sites. Nature, 457, 7230, 736, 2009.
2. Chen S.T. et al.: Deregulated expression of the PER1, PER2 and PER3 genes in breast cancers. Carcinogenesis, 26, 7, 1241, 2005.
3. Eide E.J. et al.: Control of mammalian circadian rhythm by CKIepsilon-regulated proteasome-mediated PER2 degradation. Mol. Cell. Biol., 25, 7, 2795, 2005.
4. Legembre P. et al.: Identification of SNF1/AMP kinase-related kinase as an NF-kappaB-regulated anti-apoptotic kinase involved in CD95-induced motility and invasiveness. J. Biol. Chem., 279, 45, 46742, 2004.
5. Lefebvre D.L., Rosen C.F.: Regulation of SNARK activity in response to cellular stresses. Biochim. Biophys. Acta, 1724, 1, 71, 2005.
6. Minchenko O.H. et al.: Circadian genes as sensitive markers of bioinsecurity. Environment & Health, 1, 48, 10, 2009.
7. Minchenko O.H. et al.: Hypoxia induces transcription of 6-phosphofructo-2-kinase/fructose-2,6-bisphosphatase 4 gene via hypoxia-inducible factor-1alpha activation. FEBS Lett., 576, 1, 14, 2004.
8. Oishi K. et al.: CLOCK is involved in the circadian transactivation of peroxisome-proliferator-activated receptor alpha (PPARalpha) in mice. Biochem. J., 386, 3, 575, 2005.
9. Rudic R.D. et al.: BMAL1 and CLOCK, two essential components of the circadian clock, are involved in glucose homeostasis. PLoS Biol., 2, 11, E377, 2004.
10. Shih H.C. et al.: Disturbance of circadian gene expression in endometrial cancer: detection by real-time quantitative RT-PCR. Oncol. Rep., 14, 6, 1533, 2005.
11. Tsinkalovsky O. et al.: Circadian variations in clock gene expression of human bone marrow CD34+ cells, J. Biol. Rhythms., 22, 2, 140, 2007.
12. Tsuchihara K. et al.: Susceptibility of Snark-deficient mice to azoxymethane-induced colorectal tumorigenesis and the formation of aberrant crypt foci. Cancer Sci., 99, 4, 677–682, 2008.
13. Turek F.W. et al.: Obesity and metabolic syndrome in circadian Clock mutant mice. Science, 308, 5724, 1043, 2005.
14. Winter S.L. et al.: Expression of the circadian clock genes Per1 and Per2 in sporadic and familial breast tumors. Neoplasia, 9, 10, 797, 2007.
15. You S. et al.: Daily coordination of cancer growth and circadian clock gene expression. Breast Cancer Res. Treat., 91, 1, 47, 2005.
Pobrania
Opublikowane
Numer
Dział
Licencja
Prawa autorskie (c) 2010 Autorzy
Praca jest udostępniana na licencji Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 3.0 Unported License.
