Tom 22 Nr 4 (2009), Artykuły
Tom 22 Nr 4 (2009)

Chromatografia cienkowarstwowa cukrów w materiale roślinnym

Artykuły
Opublikowane 2009-12-30
Agnieszka Skalska-Kamińska
Department of Chemistry, Laboratory of Planar Chromatography, Medical University of Lublin
Grażyna Matysik
Department of Chemistry, Laboratory of Planar Chromatography, Medical University of Lublin
Magdalena Wójciak-Kosior
Department of Chemistry, Laboratory of Planar Chromatography, Medical University of Lublin
Helena Donica
Department of Laboratory Diagnostic, Medical University of Lublin
IRENIreneuszEUSZ Sowa
Department of Chemistry, Medical University of Lublin

Abstrakt

W pracy przedstawiono prostą metodę rozdziału wzorców monosacharydów i ich pochodnych alkoholowych oraz szereg (sześć) metod derywatyzacji cukrów prostych. Wykorzystano dwie fazy stacjonarne (żel krzemionkowy oraz żel modyfikowany grupami diolowymi) oraz kilkanaście faz ruchomych. Metodę wykorzystano następnie do analizy hydrolizatu polisacharydów z kwiatów malwy czarnej (Malvae arborae flos). Do hydrolizy próbek został użyty kwas siarkowy (VI). Na żelu krzemionkowym zidentyfikowano galaktozę. Płytki modyfikowane grupami diolowymi zostały wykorzystane do analizy monosacharydów po raz pierwszy. Najlepszy rozdział osiągnięto stosując mieszaninę 1-propanolu i octanu etylu jako fazę ruchomą. W tym układzie chromatograficznym zidentyfikowano glukozę.

PDF (Angielski)

Bibliografia

1. Chen H. et al.: Antioxidant activities of different fractions of polysaccharide conjugates from green tea (Camellia Sinensis). Food Chem., 106, 559, 2008.

2. Dong O. et al.: Structural characterization of the water-extractable polysaccharides from Sophora subprostata roots. Carbohydrate Polymers, 54, 13, 2003.

3. Drozdova I. L, Bubenchikov R. A.: Composition and anti-inflammatory activity of polysaccharide complexes extracted from sweet violet and low mallow. Pharm. Chem. J., 4, 29,2005.

4. Dyeing Reagents for Thin Layer and Paper Chromatography, Reagents MERCK, Darmstadt 1980.

5. Hromadkova Z. et. al.: Comparision of classical and ultrasound-assisted extraction of polysaccharides from Salvia officinalis L. Ultrasonics Sonochem., 5, 163, 1999.

6. Jork H., Funk W., Fischer W., Wimmer H.: Thin-Layer Chromatography. Reagents and Detection Methods. VCH Publishers, Weinhein 1990.

7. Kolmünzer S.: Farmakognozja, Wyd. Lek. PZWL, Warszawa 2000.

8. Kurbanova A. D. et al.: Polysaccharides of saponin-bearing plants. Chem. Nat. Comp., 6, 608, 2002.

9. Opieńska-Blauth I., Smoczkiewiczowa A.: Vademecum chromatograficzne. PWN, Warszawa 1968.

10. Soczewiński E., Wójciak M., Pachowicz K.: Rapid thin layer chromatographic systems for the analysis of sugars. Chem Anal., 43, 823, 1998.

11. Strzelecka H. (ed.), Chemiczne metody badań roślinnych surowców leczniczych. PZWL, Warszawa 1987.

12. Tannin-Spitz T. et al.: Antioxidant activity of the polysaccharide of the red microalga Porphyridium sp. J. Appl. Phyco., 17, 215, 2005.

13. Waksmundzka-Hajnos M. (ed.): Thin Layer Chromatography in Phytochemistry. CRC Press, New York 2008.

14. Wang Q., Fang Y. J.: Analysis of sugars in traditional Chinese drugs. Chromatogr. B, 812, 309,2004.

15. Wang H., Ooi E. V., Ang P. O.: Antiviral polysaccharides isolated from Hong Kong brown seaweed Hydroclathrus clathratus. Sci. China Ser. C-Life Sci., 50, 611, 2007.

16. Xu B. et al.: Isolation and characterization of an anti-HSV polysaccharide from Prunella vulgaris. Chin. J. Chromatogr., 21, 410, 2003.

17. Yu R. et al.: Structural characterization and antioxidant activity of polysaccharide from the fruiting bodies of cultured Cordyceps militaris. Carbohydrate Polymers, 70, 430, 2007.

Creative Commons License

Praca jest udostępniana na licencji Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 3.0 Unported License.

Prawa autorskie (c) 2009 Autorzy

Downloads

Download data is not yet available.