Kaspaza 8 maker zewnętrznej drogi przewodzenia sygnału do apoptozy w śmierci hepatocytów szczura wywołanej egzogennym tlenkiem azotu
Słowa kluczowe:
tlenek azotu, apoptoza, kaspaza 8, wątrobaAbstrakt
Celem pracy była immunohistochemiczna ocena eksresji kaspazy 8 podczas apoptozy hepatocytów szczura wywołanej L-argininą – substratem tlenku azotu (NO).
Szczury użyte w doświadczeniu zostały podzielone na dwie równoliczne grupy. Doświadczalne szczury dostawały per os L-argininę 40mg/kg masy ciała co 2-gi dzień przez 2 tygodnie i zostały dekapitowane po 3 tygodniach. Kontrolne szczury dostawały per os 2ml wody destylowanej co 2-gi dzień przez 2 tygodnie i zostały dekapitowane również po 3 tygodniach. Wycinki wątroby wzięte po dekapitacji zostały zbadane immunohisto-chemicznie przy użyciu standardowej trzystopniowej metody w celu wykrycia immunolokalizacji kaspazy 8. Wyniki badań zostały przedstawione jakościowo – opis intensywności barwnej reakcji w miejscu poszukiwanego białka w wątrobie szczurów. Ilościowej oceny wyników badań dokonano przy użyciu programu komputerowego Analysis-pro – liczono pole powierzchni zajętej przez barwną reakcję antygen-przeciwciało.
Ilościowa ocena ekspresji kaspazy 8 wskazała, że pole powierzchni zajętej przez dodatni odczyn dla tego białka w wątrobie samic z grupy doświadczalnej (243,59 um2+/-262,43) było porównywalne do obliczonego w wątrobie samic z grupy kontrolnej (403,10 um2+/-215,91)(p=0,38). W niniejszym doświadczeniu dawka L-argininy podana samicom szczura była zbliżona do dawki podawanej kobietom w ciąży powikłanej gestozą. Doświadczenie wykazało, że dawka ta nie wywołuje apoptozy hepatocytów, w której sygnał do indukcji przebiega drogą zewnętrzną przez aktywację kaspazy 8.
Bibliografia
1. Cacicedo J.M., Gauthier M.S., Lebrasseur N.K., Jasuja R., Ruderman N.B., Ido Y. Acute Exercise Activates AMPK and eNOS in the Mouse Aorta. Am. J. Physiol. Heart. Circ. Physiol., 2011; Jul 1. [Epub ahead of print].
2. Hibbs J.B. Jr., Taintor R.R., Vavrin Z., Rachlin EM. Nitric oxide: a cytotoxic activated macrophage effector molecule. Biochem. Biophys. Res. Commun. 1988; 157: 87-94.
3. Garthwaite G., Batchelor A.M., Goodwin D.A., Hewson A.K., Leerning K., Ahmed Z., Cuzner M.L., Garthwaite J. Pathological implications of iNOS expression in central white matter: an ex vivo study of optic nerves from rats with experimental allergic encephalomyelitis. Eur. J. Neurosci. 2005; 21: 2127-2135.
4. Rytlewski K., Zdebski Z. Nitric oxide – one of the mechanisms that prevent changes that occur during pregnancy. Gin. Pol., 2001; 72: 738-743.
5. Furchgott R.F. Endothelium-derived relaxing factor: discovery, early studies, and identification as nitric oxide. Biosci. Rep., 1999; 19: 235-251.
6. Thiemermann C., Vane J.R. Inhibition of nitric oxide synthesis raduces the hypotension induced by bacterial lipopolisaccharides in the rat in vivo. Eur. J. Pharmacol., 1990; 182: 591-95.
7. Gauthier K.M., Zhang D.X., Ewards E.M., Holmes B., Campbell W.B. Angiotensin II dilates bovine adrenal cortical arterioles: role of endothelial nitric oxide. Endocriniolgy, 2005; 146: 3319-3324.
8. Wang K., Brems J.J., Gamelli R.L., Holterman A.X. C/EBPα and C/EBPβ binding proteins modulate hepatocyte apoptosis through iNOS signaling pathway. Biochim. Biophys. Acta, 2011; 1813:1395-1403.
9. Eu J.P., Liu L., Zeng M., Stamler J.S. An apoptotic model for nitrosative stress. Biochemistry, 2000; 39: 1040-1047.
10. Bielak-Żmijewska A. Mechanizmy oporności komórek nowotworowych na apoptozę. Kosmos. Probl. Nauk Biologicznych, 2003; 52: 157-171.
11. Krammer P.H. CD95(APO-1/Fas)-mediated apoptosis: live and let die. Adv. Immunol., 1999; 71: 163-210.
12. Kruidering M., Evan G.I. Caspase-8 in apoptosis: the beginning of "the end"? IUBMB Life, 2000; 50: 85-90.
13. Cherla G., Jaimes E.A. Role of L-arginine in the pathogenesis and treatment of renal disease. J. Nutr., 2004; 134: 2801S-2806S.
14. Raff U., Schneider R., Gambaryan S., Seibold S., Reber M., Vornberger N., Freund R., Schramm L., Wanner C., Galle J. L-arginine does not affect renal morphology and cell survival in ischemic acute renal failure in rats. Nephron. Physiol., 2005; 101: p39-p50.
15. Holm A.M., Andersen C.B., Haunso S., Hansen P.R. Effects of L-arginine on vascular smooth muscle cell proliferation and apoptosis after ballon injury. Scand. Cardiovasc. J., 2000; 34: 28-32.
16. Evans R.W., Fernstrom J.D., Thompson J., Morris S.M. Jr., Kuller L.H. Biochemical responses of healthy subjects during dietary supplementation with L-arginine. J. Nutr. Biochem., 2004; 15: 534-539.
17. Pedrycz A. Immunohistochemical, histological and ultrastructureal assessment of the effects of l-arginine as a nitric oxide (no) substrate on adriamycin-induced apoptosis in renal tubular epithelial cells and hepatocytes. Habilitation thesis 2006 Medical University in Lublin.
Pobrania
Opublikowane
Numer
Dział
Licencja
Prawa autorskie (c) 2011 Autorzy

Praca jest udostępniana na licencji Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 3.0 Unported License.