Ultrastrukturalna ocena komórek nabłonka kanalików nerkowych po terapii antracyklinami

Autor

  • Agnieszka Pedrycz Department of Histology and Embryology with Laboratory of Experimental Cytology, Medical University of Lublin, 20-080 Lublin, Poland Autor
  • Piotr Siermontowski Military Institute of Medicine, Maritime & Hyperbaric Medicine Department, Gdynia Poland Autor
  • Dorota Polz Departament of Virology, Medical University of Lublin, Lublin, Poland Autor
  • Janusz Kocki Laboratory of Clinical Genetics, Medical University of Lublin, 20-080 Lublin, Poland Autor
  • Agnieszka Puchalska-Kosiecz Ith Department Oncologic Gynecology et Gynecology Medical University of Lublin, Poland Autor

Słowa kluczowe:

ultrastruktura komórek nabłonka kanalików nerkowych, preparaty półcienkie, apoptoza, adriamycyna

Abstrakt

Antracykliny są antybiotykami przeciwnowotworowymi. W niniejszym doświadczeniu adriamycyna (ADR) wywołała apoptozę komórek nabłonka kanalików nerkowych. Materiał do badań składał się z samic szczura szczepu Wistar, które zostały podzielone na 2 kontrolne i 2 doświadczalne grupy. Grupy doświadczalne: szczury, którym podano jednorazową dootrzewnową dawkę Adriamycyny - 5 mg/kg masy ciała i dekapitowano po 4 (gr. I) i 7 (gr. III) tygodniach. Grupy kontrolne: szczury, którym podano jednorazową dootrzewnową dawkę 0,9% NaCl - 0,5 ml i dekapitowano po 4 (gr. II) i 7 (gr. IV) tygodniach. Z wycinków pobranych nerek wykonano preparaty półcienkie 0.5-0.7 μm i ultracienkie - 60nm oglądane następnie pod mikroskopem świetlnym i elektronowym. Obserwowano nasiloną apotozę komórek nabłonka kanalików nerkowych. W grupach doświadczalnych znaczna część komórek zawierała pyknotyczne jądra o zmniejszonej średnicy, zmienionym kształcie i ciemnym, niebiesko-czarnym kolorze, obserwowanym na preparatach półcienkich. Nagie, pyknotycze jądra komórkowe widoczne były również w świetle kanalików nerkowych. Opisywane zmiany nasiliły się, w czasie trwania doświadczenia.

Bibliografia

1. Kerr J.R.F., Wyllie A.H., Currie A.R. Apoptosis: a basic biological phenomenon with wide-ranging implications in tissue kinetics. Br. J. Cancer., 1972; 26: 139-257.

2. Lockshin R., Zakeri Z., Tilly J. When cells die. A comprehensive evaluation of apoptosis and programmed cell death. Wiley-Liss: 1998.

3. Pedrycz A., Kosiecz D., Drelich G., Ossowska B. Over-expression of biomarkers of environmental stress in renal epithelial cells resulting from proapoptotic activity of adriamycin: An immunohistochemical assessment. Curr. Probl. Psychiatry, 2010; 1: 161-165.

4. Dash P.R., Cartwiright J.E., Baker P.N., Johnstone A.P., Whitley G.S. Nitric oxide protects human extravillous trophoblast cells from apoptosis by a cylic GMP-depent mchanism and independly of caspase 3 nitrosilation. Ex. Cell. Res., 2003; 287: 314-24.

5. Johnstone R.W., Ruefli A.A., Lowe S.W. Apoptosis: a link between cancer genetics and chemiotherapy. Cell, 2002; 108: 153-164

6. Hengartner M.O. The biochemistry of apoptosis. Nature, 2000; 407: 770-776.

7. Jablonski E.M., Hughes F.M. Jr. The potential role of Caveolin-1 in Inhibition of Aquaporins during the AVD. Biol. Cell., 2006; 98: 33-42.

8. Gong Y.H., Guo X., Zhang X.Q. Immunoelectron microscopic studies on the process of tumor cytolysis mediated by lymphokine activated NK cells. Chung Hua Ping Li Hsueh Tsa Chih, 1994; 23: 17-19.

9. Fadok V., Bratton D.M., Rose A., Pearson R., Alan B., Ezekewitz P.M., Henson P.M. A receptor for fosfatidyloserine – specific clearance of apoptotic cells. Nature, 2000; 405: 85-90.

10. Bagnato A., Bianchi C., Caputo A., Silvestrini B., Florich A. Enhancing effect of loniamide on the inhibition of mitochondrial respiration by adriamycin. Anticancer Res., 1987; 7: 799-802.

11. Oz E., Erbas D., Surucu H.S., Duzgun E. Prevention of doxorubicininduced cardiotoxicity by melatonin. Mol. Cell Biochem., 2006; 282: 31-37.

12. Serafino A., Sinibaldi-Vallebona P., Lazzarino G., Tavazzi B., Di Pierro D., Rasi G., Ravagnan G. Modifications of mitochondria in human tumor cells during anthracycline-induced apoptosis. Anticancer Res., 2000; 20: 3383-3394.

13. Zeidan Q., Strauss M., Porras N., Anselmi G. Differential long-term subcellular responses in heart and liver to adriamycin stress. Exogenous L-carnitine cardiac and hepatic protection. J. Submicrosc. Cytol. Pathol., 2002; 34: 315-21.

14. Grzanka D., Domaniewski J., Grzanka A. Effect of doxorubicin on actin reorganization in Chinese hamster ovary cells. Neoplasma, 2005; 52: 46-51.

15. Rudolph R., Woodward M., Hurn I. Ultrastructure of doxorubicin (adriamycin)-induced skin ulcers in rats. Cancer Res., 1979; 39: 3689-3693.

16. Skomra D., Chibowski D. Assessment of Daunorubicin nephrotoxicity and effect of tocopherol and acsorbic acid on lesions induced in rat’s kidneys. Part I. histological and histochemical and biochemical studies. Ann. Univ. Mariae Curie Sklodowska, 1993; 98: 181-189.

Pobrania

Opublikowane

2011-05-19

Numer

Tom 12 Nr 1 (2011): Current Problems of Psychiatry

Dział

Artykuły

Licencja

Prawa autorskie (c) 2011 Autorzy

Creative Commons License

Praca jest udostępniana na licencji Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 3.0 Unported License.